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睡眠呼吸暫停細胞培養(yǎng)模型中,間歇性缺氧頻率幅度對內(nèi)皮傷口愈合的調(diào)節(jié)作用

更新時間:2021-11-17      點擊次數(shù):2013

 






阻塞性睡眠呼吸暫停(OSA)是一種非常普遍的呼吸系統(tǒng)疾病,具有潛在的不良神經(jīng)認知、代謝、腫瘤和心血管后果。間歇性缺氧(Intermittent hypoxia-IH)是由阻塞性睡眠呼吸暫停患者上呼吸道反復塌陷和重新開放引起的,是這種夜間呼吸系統(tǒng)疾病的主要原因之一,并與阻塞性睡眠呼吸暫停的許多發(fā)病率有關(guān)。

然而,IH也被認為是一種通過誘導、促進細胞和器官的預處理的潛在保護因子。事實上,關(guān)于IH在心血管上的具體作用仍存在持續(xù)的爭議。而IH誘導活性氧和炎癥介質(zhì)的釋放,易導致動脈粥樣硬化,從而損害血管內(nèi)皮功能,IH也可能發(fā)揮心臟保護作用,并通過激活聚焦于誘導預處理的適應(yīng)性反應(yīng)發(fā)揮治療作用。





 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

細胞培養(yǎng)是研究IH潛在影響的一種有價值的實驗方法,鑒于研究控制良好的IH模擬OSA對細胞的影響和合適的實驗設(shè)置的可用性。有研究驗證了這樣一 個假設(shè):在睡眠呼吸暫停細胞培養(yǎng)模型中,間歇性缺氧的頻率和幅度對內(nèi)皮傷口愈合有調(diào)節(jié)作用。

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實驗?zāi)康?/strong>









為了研究間歇性缺氧的頻率和幅度對主動脈內(nèi)皮傷口愈合的影響。
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實驗方法









對單層人類原代內(nèi)皮細胞進行損傷,然后進行供氧以進行細胞氧合(分別以氧分壓1%、4%、13%、20%的實驗組進行),和以不同頻率的間歇低氧實驗組進行實驗(0.6、6、60個循環(huán)周期/小時),幅度范圍(濃度13-4%或20-1%),使用新型實驗儀器,24小時后測量創(chuàng)面愈合情況。

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細胞培養(yǎng)示意圖:PDMS透氣薄膜、進氣口、出氣口、培養(yǎng)皿、培養(yǎng)基
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實驗過程









 

 


得益于技術(shù)的開發(fā),實驗的技術(shù)瓶頸已看見了曙光,方法是在一層透氣薄膜上培養(yǎng)內(nèi)皮細胞,然后在透氣薄膜下方提供高速供氧,從而讓氧氣擴散到細胞,完成氧合作用。

實驗組(氧分壓13%-4%):常用于用于典型研究的實驗組

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實驗組(氧分壓13%-4%)
實驗組(氧分壓20%-1%):此實驗組更貼近真實的阻塞型睡眠呼吸暫停病人的情況,更能模擬和反映阻塞性睡眠呼吸暫停(OSA)病人主動脈內(nèi)皮細胞的氧張力值。

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實驗組(氧分壓20%-1%)
確實,在無呼吸暫停的正常通氣和氣體交換條件下,動脈血氧分壓(PaO2)為~100mmhg(即13% O2)。
 假設(shè)在嚴重OSA事件中,動脈血氧飽和度(SaO2)可達到~60%的低點,相應(yīng)的PaO2為~30 mmHg,相當于只有4% O2。

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持續(xù)氧分壓為13%和4%,分別24小時后的傷口愈合情況
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實驗結(jié)果









 


氧分壓為4%的實驗組創(chuàng)面愈合情況顯著比對照組(氧分壓13%)高很多

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間歇低氧實驗組方面,低頻間歇低氧實驗組(0.6循環(huán)周期/小時)創(chuàng)面愈合顯著加快,模擬嚴重阻塞性睡眠呼吸暫停OSA的間歇低氧實驗組(60循環(huán)周期/小時)則沒有顯著的創(chuàng)面愈合反應(yīng)。
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總結(jié)









間歇性缺氧的頻率和幅度顯著改變傷口愈合的反應(yīng),尤其可以對主動脈內(nèi)皮傷口愈合起關(guān)鍵作用,并成為決定細胞在阻塞性睡眠呼吸暫停(OSA)中如何反應(yīng)的關(guān)鍵因素。

 


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塔望MC102活細胞環(huán)境控制器,可以提供穩(wěn)定的細胞培養(yǎng)環(huán)境,實現(xiàn)邊培養(yǎng)邊觀察,省去了使用傳統(tǒng)細胞培養(yǎng)箱的步驟,避免了搬運細胞壁過程中污染了細胞的風險。

· 可控制參數(shù):溫度、濕度(增濕)、氧氣濃度、二氧化碳濃度

· 氧氣濃度控制范圍:0.1%-25%,調(diào)節(jié)精度為0.2%,可選擇0-100%量程

· 溫度控制范圍:30?40℃,精度為0.1℃;可選配低溫功能

· 二氧化碳濃度控制范圍:0.1%-20%,調(diào)節(jié)精度為0.1%





 


 

參考文獻

1. Allen CB, Schneider BK, White CW. Limitations to oxygen diffusion and equilibration in in vitro cell exposure systems in hyperoxia and hypoxia. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol 281: L1021–L1027, 2001.

2. Almendros I, Montserrat JM, Torres M, Bonsignore MR, Chimenti L,Navajas D, Farré R. Obesity and intermittent hypoxia increase tumor growth in a mouse model of sleep apnea. Sleep Med 13: 1254 –1260, 2012. doi:10.1016/j.sleep.2012.08.012.

 

 

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